對于分子生物學(xué)來講,生物分析手段的發(fā)展,是闡明機理的必要條件。在研究分子間相互作用的道路上,人們不斷探索,總結(jié)出很多方法,免疫技術(shù),晶體衍射,核磁共振等。1948年,熒光共振能量轉(zhuǎn)移(Fluorescence resonance energy transfer,F(xiàn)RET)理論被首次提出,它可以測定1.0-6.0nm距離內(nèi)分子間的相互作用。1967年,這一理論得到了實驗驗證,將1.0-6.0nm的距離稱為光學(xué)尺。二十世紀八十年代出,通過科學(xué)家的不斷探索,F(xiàn)ret技術(shù)成功運用到蛋白質(zhì)結(jié)構(gòu)的研究中。自Fret熒光共振能量技術(shù)誕生以來,已結(jié)合多種先進的技術(shù)和方法,如電子顯微鏡,X射線衍射等,推動了分子生物學(xué)檢測手段的發(fā)展。
熒光共振能量轉(zhuǎn)移技術(shù),是采用物理方法去檢測分子間的相互作用的方法。他適用于在細胞正常的生理條件下,驗證已知分子間是否存在相互作用。此方法的檢測原理如下;
將我們要檢測的蛋白(如圖X和Y),分別偶聯(lián)上D和A熒光蛋白,D和A是一對熒光物質(zhì),我們稱之為供體(donor)和受體(acceptor)。當(dāng)用430nm的紫光去激發(fā)X融合蛋白時,它能夠產(chǎn)生490nm的藍色熒光;同樣,當(dāng)我們用490nm的藍光去激發(fā)Y融合蛋白時,它能夠產(chǎn)生530nm的黃色熒光。(結(jié)合圖1) 。
當(dāng)?shù)鞍譞和Y間沒有相互作用時(兩者的空間距離>10nm),融合蛋白X和Y分別產(chǎn)生相應(yīng)的熒光而被檢測到,
如果蛋白X和Y間存在相互作用(兩者的空間距離需<10nm,結(jié)合圖2),用紫光激發(fā)融合蛋白X其產(chǎn)生的藍光會被融合蛋白Y吸收,從而產(chǎn)生黃色熒光,這時,在細胞內(nèi)將檢測不到藍色熒光的存在。這時因為能量從X融合蛋白轉(zhuǎn)移到了Y融合蛋白,這就是熒光共振能量轉(zhuǎn)移技術(shù)。
一個理想的Fret相互作用體系,要求要有一對合適的熒光物質(zhì), 即供體的發(fā)射光譜與受體的吸收光譜有明顯的重疊。且當(dāng)供體的激發(fā)波長時對受體無影響,供體和受體的發(fā)射光譜要完全分開,否則容易造成光譜干涉,而使反應(yīng)體系不穩(wěn)定。目前,較為常用的供體-受體分子對,主要有綠色熒光蛋白類(GFPs)和染料類。綠色熒光蛋白類有CFP-YFP,BFP-GFP,BFP-YFP等,染料類的有Cy3-Cy5,F(xiàn)ITC-Rhodamine等。且這些熒光物質(zhì)要能夠標記在研究對象上。
優(yōu)點 | 缺點 |
在活細胞的正常生理條件下進行檢測,觀察大分子在細胞內(nèi)的構(gòu)象變化與相互作用,并彌補了需破碎細胞檢測相互作用的缺點 | 應(yīng)用比較局限,一般需要在待檢測分子上偶聯(lián)熒光物質(zhì)(加上標記) |
靈敏度高,可實現(xiàn)對單細胞水平的研究,研究單個受體分子 | 對實驗要求較高,如供受體的光譜重疊不好,會導(dǎo)致熒光干擾,對供受體的抗干擾能力,水溶性等要求高 |
可與多種儀器和技術(shù)結(jié)合使用,如顯微鏡,色譜技術(shù),電泳,流失細胞技術(shù)等 | 需要不斷探索合適的供體和受體,且能夠標記分子 難以觀察瞬時的分子間作用,檢測要求大量的樣品 |
以熒光物質(zhì)CFP(供體)-YFP(受體)為例,檢測AB蛋白在細胞內(nèi)的相互作用。